siRNA沉默Fas基因減少大鼠肝移植冷保存和缺血再灌注損傷的研究.pdf_第1頁
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文檔簡介

1、第一部分:Fas siRNA的設計、合成與篩選按sirNA的設計原則,設計和化學合成3個針對大鼠Fas的siRNA,對大鼠正常肝細胞(BRL細胞)傳代養(yǎng)后,轉染Fas siRNA,篩選高效抑制Fas表達的siRNA。 材料與方法:在Genebank中查找大鼠Fas mRNA序列((3enBank Accession No.NM139194),應用Ambion公司的設計軟件,設計針對Fas mRNA的3對Fas siRNA序列:

2、 Fas siRNA1:175位點,正義鏈:5’GACAACAACUGCAGAA dAdC3',反義鏈:3’dCdA GCUGUUGUUGAGAGUCUU 5'; Fas siRNA2:315位點,正義鏈:5’ACACGGACAGGAAACACUA dGdT 3'反義鏈:3’dTdG UGUGCCUGUCCUUUGUGAU 5': Fas siRNA3:481位點,正義鏈:5'CACCUCGUGUGGACU

3、UGAA dTdG 3'.反義鏈:3'dGdT GUGGAGCACACCUGAACUU 5'。 同時合成陰性對照siRNA:正義鏈:5'UUCUCCGAACGUGUCACGUdTdT3';反義鏈3'dTdT AAGAGGCUUGCACAGUGCA 5'。 化學合成方法生產Fas siRNAs。 取液氮保存之大鼠BRL細胞株,傳代培養(yǎng)后用于轉染。 試驗分組:①空白對照組;②siRNA陰性對照組;③Fa

4、s siRNA 1組:④FassiRNA 2組;⑤Fas siRNA 3組。 3對Fas siRNA分別按50nmol/L的濃度轉染BRL細胞,作為Fas siRNA組,以陰性siRNA轉染細胞作為siRNA陰性對照組,非轉染細胞作為空白對照組。轉染前細胞培養(yǎng)基更換為Opti-MEM,在30 μl Opti-MEM中稀釋siRNA,50μlOpti-MEM中加入2μl Lipofectamine2000混合,將稀釋的siRNA

5、與稀釋的lipofectamine2000混合,室溫培養(yǎng)20min,然后將siRNA和Lipofectamine2000的混合液加入細胞培養(yǎng)孔中,搖晃孔板使充分混合。孵育48h后收集細胞,RT-PCR檢測Fas mRNA,Western blot檢測Fas蛋白。 采用SYBR Green Ⅰ實時熒光定量PCR方法,對Fas mRNA進行相對定量檢測。使用管家基因GAPDH作為內參,每一樣本的Fas mRNA相對量除以GAPDH

6、的相對量,即標準化,然后再用標準化值比較Fas mRNA在各樣本中轉錄水平的差異。Western blot檢測各轉染細胞Fas蛋白水平,同時檢測β-actin蛋白,作為內參較正Fas蛋白定量。 數據處理:計量資料采用均數4-標準差(x±s),進行單因素方差分析或予以一般統計學描述。數據統計使用spss10.0軟件包,α設定為0.05。 本實驗共合成3對siRNA,轉染BRL細胞48h后,抽提總RNA進行RT-PCR檢測

7、Fas mRNA。3對siRNA均發(fā)揮了不同程度的干預效應(P<0.01),干預效果由強至弱為:Fas siRNA2>Fas siRNA1>Fas siRNA3,Fas mRNA相對表達量(Fas/GAPDH)分別低于空白對照組(69.3±7.8)﹪、(53.5±9.0)﹪和(45.0±8.9)﹪(P均<0.01),以Fas siRNA2抑制效率最高。而陰性對照siRNA無干預作用,與空白對照組相比無統計學差異(P>0.05)。

8、 Westem blot結果經計算機灰度掃描并與內參照(β-actin)比較分析顯示:轉染Fas siRNA后灰度比明顯減低,Fas蛋白表達量分別低于空白對照(50±5)﹪、(75±7)﹪和(57±9)﹪(P均<0.01),表明在蛋白水平Fas siRNA能顯著抑制Fas基因表達,蛋白表達變化與mRNA改變基本一致,Fas siRNA2抑制效率最高。而siRNA陰性對照和空白對照相比無明顯蛋白表達改變。 第二部分:本實驗觀察

9、冷保存大鼠肝臟隨時程延長細胞凋亡及Fas基因表達在冷灌注保存肝臟組織中的變化,并探討通過水壓注射法轉染Fas siRNA對Fas基因表達進行抑制,能否減少冷灌注保存大鼠肝臟組織中的細胞凋亡。 材料與方法: 1、試驗對象:16周齡SD大鼠54只,體重200-250g,均為雄性。 2、水壓注射法轉染siRNA:每組大鼠18只,10﹪水合氯醛腹腔注射麻醉,經陰莖靜脈按實驗分組注入配制好的實驗藥物,注射時間控制在15秒

10、左右。實驗分組:Fas siRNA組:注入200nmol/kg的Fas-siRNA(配入10﹪體重的磷酸鹽緩沖液(PBS)內);siRNA陰性對照組:注入200nmol/kg的陰性對照siRNA(配入10﹪體重的PBS內)??瞻讓φ战M:18只;僅注射10﹪體重的PBS。 3、大鼠供肝獲?。恨D染后48h,大鼠在乙醚麻醉下經腹主動脈進行肝臟冷灌注取肝。 4、標本采集:冷保存2、4、6h后每組取6只供肝,取肝中葉進行相關檢測

11、。 5、檢測內容:組織切片HE染色檢查、Fas免疫組化檢查、TUNEL染色檢測細胞凋亡、電鏡檢查,提取肝組織RNA行RT-PCR檢測Fas mRNA;組織勻漿抽提蛋白Western blot檢測Fas蛋白。 6、數據處理:計量資料采用均數士標準差(x±s),采用方差分析,P<0.05時有顯著性差別。 結果: 1、所有大鼠都能安全接受水壓注射法轉染Fas siRNA。 2、TUNEL法檢測冷保存

12、大鼠肝組織肝臟組織中細胞凋亡,空白對照組的凋亡指數分別為2.40±0.29﹪、2.65±0.20﹪、6.65±0.38﹪,陰性siRNA對照組分別為2.25±0.31﹪、2.82±0.10﹪、7.60±0.29﹪。在2h、4h時,同組不同保存時間肝臟組織中凋亡細胞計數無顯著性差異,但當保存時間到6h時凋亡細胞增多(P<0.01)。Fas siRNA組各時點凋亡計數分別為2.27±0.22﹪、1.88±0.14﹪、1.97±0.15﹪,各

13、時點差別不明顯,2h、4h時與對照組相比無明顯差別,但6h時明顯低于對照組(P<0.01)。電鏡檢測、HE染色檢查發(fā)現Fas siRNA組的損傷較輕,細胞凋亡少。 3、在空白對照組和siRNA陰性對照組中,RT-PCR檢測2h、4hFas mRNA表達量無明顯差別,組間差別也不明顯,此時Fas siRNA組的表達量明顯較對照組低(P<0.01);6h兩組對照組的。Fas mRNA表達量明顯增高(P<0.01),組間差別不明顯,

14、而Fas siRNA組的Fas mRNA表達量仍無明顯增高,與對照組問的差別更明顯(P<0.01)。 4、在空白對照組和siRNA陰性對照組中,2、4h Fas蛋白量無明顯差別,組間差別不明顯,但Fas siRNA組的Fas蛋白量明顯較對照組低(P<0.01);6h兩組對照組的Fas蛋白水平增高,組問差別不明顯,而Fas siRNA組的Fas蛋白水平仍無明顯增高,與兩組對照組間的差別更明顯(P<0.01)。在免疫組化檢測也可見

15、到Fas蛋白被Fas siRNA明顯下調。 第三部分:本試驗建立大鼠肝移植模型,探討針對大鼠Fas基因的siRNA,能否通過抑制Fas基因,減少肝移植缺血再灌注時的細胞凋亡,達到保護供肝的作用。 材料與方法:實驗動物:雄性SD大鼠150只,體重200-250g,分為三組,每組25對雄性SD大鼠。Fas siRNA組:供體大鼠經陰莖靜脈注入200nmol/kg的Fas-siRNA(配入10﹪體重的PBS內)。siRNA對

16、照組:供體大鼠經陰莖靜脈注入200nmol/kg的陰性對照siRNA(配入10﹪體重的PBS內)??瞻讓φ战M:供體大鼠經陰莖靜脈僅注射10﹪體重的PBS。轉染試驗后48h,將供體取肝進行原位肝移植手術。 肝臟復流后1、3、6、12、24h每組處死5只受體大鼠取材,經下腔靜脈取血2 ml,送檢AST、ALT,作為肝細胞保存再灌注損傷的指標。 取肝中葉,其右半部分于-80℃保存?zhèn)溆茫蠷T-PCR檢測Fas mRNA、W

17、estern blot檢測Fas蛋白;部分行HE染色、TUNEL染色、免疫組織化學染色檢測、電鏡檢測。 數據處理:實驗數據以x±s表示,使用SPSS 10.0對實驗數據進行單因素方差分析。結果對照組與siRNA組肝移植再灌注后血清ALT、AST水平都逐漸升高,6h達到高峰,隨后逐漸下降。各時點siRNA組的血清ALT、AST水平明顯低于對照組。 TUNEL法和透視電鏡檢測細胞凋亡,可見在各時點所取的大鼠肝臟組織標一VII—本中

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